技术贴|ELISA实验结果不理想？看这里！
信息来源：金开瑞 作者：genecreate 发布时间：2019-11-15 16:06:45
前几期小编已经和大家分享了WB和IHC实验中常见问题及解决方案，这期咱们聊聊ELISA实验中的那些糟心事。那ELISA实验中都有哪些糟心事呢？我们一起来吐槽吐槽啊，高背景经常遇见吧？遇见白板是不是很头疼？显色淡也不陌生吧，更别说重复性不好了～真叫人头大！莫慌，请听小编为大家一一解答，逐个击破！
1、高背景/非特异性染色
| 结果描述 | 可能的原因 | 建议或预防措施 |
| 终止后，整板结果显现均一的黄色或淡黄色；或标曲有线性但背景过高 | 整板发黄现象可能由于错加其他试剂造成 | 实验前检查试剂的组分及批号，确认所有组分均属于对应的试剂盒。不同试剂盒或不同批号的试剂不能混用 |
| 未充分清洗酶标板 | 确保清洗过程中每个微孔所加入洗涤液量一致。清洗完成后，将酶标板用力按压在吸水纸上，以除去残余的缓冲液 | |
| 孵育时间过长 | 严格按照说明书操作 | |
| 酶标记物污染了吸头及盛放显色剂容器或阳性对照污染了微孔 | 吸取不同的试剂时应更换吸头，配置不同的试剂组分时，应使用不同的储液器皿。操作时请使用移液器 | |
| 检测抗体或Avidin-HRP的浓度过高 | 检查浓度计算是否正确或进一步稀释后再使用 | |
| 底物在使用前曝光或污染 | 加入底物前，应始终避光保存 | |
| 显色时间过长 | 严格按照说明书显色时间操作 | |
| 读取吸光值时使用了错误的滤光片 | TMB为底物时应在450nm波长读取吸光值，并以650nm作为校正波长 |
2、白板
| 结果描述 | 可能的原因 | 建议或预防措施 |
| 显色步骤结束后，酶标板所有孔均无颜色。阳性对照不显色 | 组分试剂混淆使用 | 配制或使用时应看清楚标签。 |
| 洗板及加样过程中，酶标物受污染失活失去催化显色剂显色的能力 | 确认盛酶标的容器不含酶抑制剂（如NaN3等），确认配制洗液的容器已洗干净。 | |
| 遗漏了某种试剂或某个步骤 | 详细审阅说明书，并严格遵循操作步骤。 |
3、显色淡
| 结果描述 | 可能的原因 | 建议或预防措施 |
| 包括标曲、样本在内的所有板孔颜色均较淡。 | 试剂盒超过有效期或储存不当 | 请在有效期内使用，并按照说明书推荐的保存条件保存，避免污染 |
| 试剂、样品用前未平衡 | 所有试剂、样品应置室温平衡 30min左右 | |
| 移液器吸量不足，移液抽吸排放太快，吸头内壁挂液太多或内壁不清洁 | 校正移液器，吸头要配套，每次吸头要吻合紧密。移液不宜过快，排放应完全。吸头内壁要清洁，最好一次性使用 | |
| 孵育反应时间不足 | 定时器准确定时 | |
| 显色反应时间不足 | 一般在15-30min，20min为佳，特殊除外 | |
| 显色剂加入顺序颠倒（双组分） | 请严格按说明书 | |
| 洗涤次数增加，浓缩洗液稀释倍数不符合要求 | 减少洗涤冲击力，按说明书要求稀释浓缩洗液、洗涤时间，准确记录洗涤次数及用量 | |
| 蒸馏水水质有问题 | 配制好的洗液一定要检测PH值是否呈中性 | |
| 洗板及加样过程中，酶标物受污染失活而失去催化显色剂显色的能力 | 确认盛酶标的容器不含酶抑制剂（如NaN3等），确认配制洗液的容器已洗干净，确认配制洗液的纯化水达到要求且未受污染 | |
| 标曲正常，样本显色较淡. | 样本使用NaN3防腐，抑制了酶的反应 | 样本不可使用NaN3 |
| 待测标本中可能不含强阳性标本，故结果可能是正常的 | 如有怀疑，可复检 | |
| 目测结果正常，但酶标仪读值偏低 | 读取吸光值时使用了错误的滤光片 | TMB为底物时应在450nm波长读取吸光值，并以650nm作为校正波长 |
4、标准曲线不佳/重复性不好
| 结果描述 | 可能的原因 | 建议或预防措施 |
| 重复性差 | 标准品配制有误 | 严格按照说明书标准品配制进行操作。仅使用推荐的稀释液对标准品进行稀释 |
| 试剂盒储存方法不当或储存环境太差 | 请在说明书推荐的保存条件下保存，不要将重悬后的组分在室温放置时间过长 | |
| 过早稀释各工作组分 | 各工作组分请在使用前10分钟配制，并立即加入到微孔中 | |
| 样本加入后未混匀 | 针对同时加入多种试剂组分，加样后在混匀器上充分混匀。注意稳拿稳放，防止外溅 | |
| 酶标仪测定重复性差 | 校准酶标仪 | |
| 孵育时间、洗涤条件、显色条件、操作人员不一致 | 重复测定标本，反应条件、人员等尽可能与上次保持一致 | |
| 洗涤不正确 | 移液器准确加入200μl/孔洗涤液或注满各孔，但不要溢出。洗板机洗板时不应有堵孔，洗涤应充分 | |
| 孵育温度恒温效果不好 | 保证温度恒定，避免局部温度过高过低 | |
| 加液时，过多残留于孔壁上 | 加液时，吸头在不碰到孔底的前提下尽量沿着孔壁下方加液 | |
| 耗材重复使用 | 吸取不同的试剂时应更换吸头，配置不同的试剂组分时，应使用不同的储液器皿 | |
| 微孔底部被划伤或存在污垢 | 操作时细心，注意不要触碰底部。擦拭酶标板底部，以去除污垢或指纹 | |
| 阈值附近时阴时阳 | 同一样品做3个复孔，以2个（含2个以上相同结果为准） | |
| 加样时交叉污染 | 加标本时尽量避免交叉污染 | |
| 出现随机性的花板、跳孔现象 | 手工洗板造成的交叉污染 | 手工洗板时前 3次注洗液后应立即弃去，后几次再设定浸泡时间，可减少交叉污染 |
| 拍板时交叉污染 | 拍板时用合适的吸水纸巾，不要把无关物质拍进板孔，并尽量不要在同一位置拍，以免交叉污染 | |
| 洗板机加液头堵塞导致加液不满或吸液残留量较大，造成花板、跳孔 | 疏通加液头，使洗板时每孔均注满洗液，吸液时残留量要小 | |
| 样本离心处理不全，致使反应孔内发生凝血现象或存在沉淀物或残留细胞成分干扰 | 血清血浆应充分离心，3000rpm 6min以上 | |
| 样品放置时间过长，污染 | 样品应保持新鲜，或低温保存，防止污染 | |
| 洗涤液配制有误或直接误用浓缩洗涤液 | 按说明书配制 |
金开瑞试剂盒及胶体金服务拥有完善的ELISA试剂盒、胶体金免疫层析、荧光免疫层析开发平台，专业的研发技术人员，结合成熟的抗原、抗体研发系统，可从事科研及诊断靶点的试剂盒、胶体金的研发以及抗原和抗体的标记、样本代测、试剂盒及胶体金的组装等定制服务。
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