细胞内的"GPS"追踪术:揭秘蛋白亚细胞定位的奥秘
细胞就像一座精密运转的微型城市,细胞核是“市政府”,线粒体是“发电站”,高尔基体是“物流中心”……每个蛋白分子都各司其职,才能维持基础的生命活动。而亚细胞定位研究,就是绘制这张“城市地图”的关键技术,它不仅能揭示疾病的发病机制,还是药物靶点筛选的“指南针”!
什么是亚细胞定位?
亚细胞定位可将某种蛋白或者表达产物定位于细胞中的具体位置,如细胞核内、各种细胞器以及质膜上,从而为理解基因的作用机制提供研究方向。
将目的基因与荧光蛋白的N端或者C端融合,连接在同一个过表达载体上,通过瞬时转化技术或稳定遗传转化技术(比如农杆菌侵染),使得该融合蛋白在材料细胞内表达,目标蛋白会牵引荧光蛋白一起定位到目标细胞器,在扫描共聚焦显微镜的激光照射下会发出绿色荧光,从而可以精确地定位蛋白质的位置。
给蛋白贴上"追踪器"
❖ 验证未知蛋白的“落脚点”:有新发现的蛋白,先看看它定位在细胞哪个角落!
❖ 探究疾病与定位异常的关系:比如,错误定位的蛋白是否导致癌症转移。
❖ 助力药物开发:若药物能修正蛋白的错误定位,或许就是治病良方!
优势:
➤ GFP融合蛋白技术能够直接观察到目标蛋白在细胞内的位置和分布,无需额外的标记或处理步骤,使得实验结果更加直观和易于理解。
➤ GFP蛋白在激发光照射下能够发出强烈的绿色荧光,这使得即使目标蛋白在细胞内的表达量较低,也能够被清晰地观察到。
➤ 与其他可能涉及细胞固定、切片等处理步骤的方法相比,GFP融合蛋白技术可以在活细胞中进行实时观察,避免了因处理过程对细胞造成的损伤和改变。
亚细定位marker 如何选择?
植物亚细胞定位:金开瑞使用的的是PBI121-EGFP和PBI121-mCherry两个载体。将待测蛋白连接到PBI121-EGFP载体上,相应细胞器的Marker基因序列构建至PBI121-mCherry载体上,再转化农杆菌并注射烟草后观察荧光信号。
动物亚细胞定位:金开瑞使用的是pcDNA3.1-EGFP和pcDNA3.1-mCherry两个载体。待测蛋白连接到pcDNA3.1-EGFP载体上,相应细胞器的Marker基因序列构建至pcDNA3.1-mCherry载体上,转染293T细胞后观察荧光信号。
mCherry: 红色荧光蛋白,可以和绿色荧光蛋白(GFP)共同标记。
表1. 金开瑞生物亚细胞定位实验中的细胞器Marker信息
实验流程
01.在烟草中:
♦基因合成及载体构建
(1)将X基因模板构建到PBI121-EGFP载体上测序验证;
(2)将细胞核Marker基因序列构建至PBI121-mCherry载体上测序验证。
♦质粒转化及烟草注射
(1)种植本氏烟草(Nicotiana benthamiana):将萌发的本氏烟草(Nicotiana benthamiana)在16 h光照/8 h黑暗,温度28℃,相对湿度70%条件下培养大概4~5周;
(2)合成好的载体转化农杆菌GV3101(pSoup-p19);
(3)挑取含有目的载体的农杆菌单克隆,在含有10 mL相应抗生素(K+Rif+)的LB液体培养基中扩大培养,28℃,220rpm下大概培养36h~48h。
(4)室温,7000 rpm离心2 min收集菌体,用MES缓冲液(10mL)清洗菌液一次,加入5 mL的MES缓冲液重悬菌体,取稀释十倍的菌液测量OD600的值,调整OD600为1.2~1.6(1.4)左右,等体积混合两种菌液,加入乙酰丁香酮至终浓度为150 μM。摇菌1~1.5h;
(5)计算公式:
混合菌:1.4*摇菌体积=OD值*菌体积*10
单菌:0.7*摇菌体积=OD值*菌体积*10
(6)选取生长期为1个月左右完全伸展的烟草叶片,将混合好的菌液用1 mL注射器(去掉针头)从烟草叶背面进行注射。
(7)室温避光培养36~48h后在激光共聚焦下拍照
(8)菌液组合如下表:
序号 |
菌液组合 |
1 |
GFP+OsMADS57-mCherry(positive control) |
2 |
X-GFP+OsMADS57-mCherry |
02.在293T细胞中
♦基因合成及载体构建
(1)将目的基因序列构建至pcDNA3.1-EGFP载体上测序验证;
(2)将Marker基因序列构建至pcDNA3.1- mCherry载体上测序验证
♦质粒转染
(1)转染前一天24孔培养板中铺入爬片,接种细胞,使转染时细胞密度在60-70%,培养基为DMEM + 10% FBS;
(2)将目的基因和marker各2μg质粒加入50 μL无血清DMEM培养基中室温孵育5min,将2 μL lipo2000转染试剂加入50 μL无血清DMEM培养基中,将上述两者混合后室温孵育15 min,补加无血清DMEM培养基至500 μL;
(3)吸弃孔中培养基,加入上一步制备的转染复合物500μL,37℃培养4-6h;
(4)吸弃培养基,加入1 mL完全培养基,37℃培养48 h;
(5)细胞用4% 多聚甲醛中固定 10 min;
(6)用 PBS 洗涤细胞 3 次;
(7)载玻片上加抗荧光猝灭剂,指甲油封片;
(8)激光共聚焦显微镜拍照。
(9)质粒转染组合如下表:
序号 |
转染质粒组合 |
1 |
pcDNA3.1-EGFP + STOML3-mCherry(对照组) |
2 |
目的蛋白-EGFP + STOML3-mCherry(实验组) |
备注:
1.DNA的量: Lipofectamine 2000=1:1
2.细胞密度大约占培养板的60%左右,转染
结果解读
01.在烟草中
图1. X蛋白烟草中的亚细胞定位
明场下拍摄主要是为了显示细胞状态,有活力的原生质体细胞应该是饱满圆润的,变形或破碎的细胞说明此时细胞不是最适状态或细胞已死亡;显示荧光确实是细胞内蛋白表达的,而不是细胞碎片及杂质产生的荧光。
对照组中:mCherry信号(红色):在细胞膜上呈现连续、清晰的环状分布,与明场图像(Bright Field)的细胞轮廓高度吻合,验证了实验体系的可靠性,为实验组提供可信的参照基准。
实验组中:X 蛋白它主要是在细胞膜上有绿色的荧光信号。marker用的是 OsPIP1,是已知的细胞膜水通道蛋白,如果绿色的荧光信号和红色的marker 蛋白的红色荧光信号可以重叠的话,它就会发出黄色的一个荧光信号。我们会发现在Merge完成之后。X蛋白的GFP信号与mCherry-OsPIP1信号在细胞膜上高度重叠(Merge图像中黄色区域),表明X蛋白定位于质膜。
02.在原生质体中
图2. AtWRKY29在漆姑草原生质体中的亚细胞定位(Cha et al., 2019)
避坑指南
注意事项:避开这些坑,实验结果更靠谱!
❖对照实验不能少:设置空载体转染组、已知定位的阳性对照蛋白。
❖荧光淬灭要当心:及时拍照,避光保存样本,防止信号衰减。
❖过表达陷阱:过量表达可能造成定位假象,建议内源标记或低浓度转染。
❖活细胞vs固定细胞:固定可能改变定位,活细胞动态观察更真实!
参考文献:
Cha O K, Lee J, Lee H S, et al. Optimized protoplast isolation and establishment of transient gene expression system for the Antarctic flowering plant Colobanthus quitensis (Kunth) Bartl[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2019, 138(3): 603-607.
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